微生物單細胞研究進行時|顯微光鑷技術助力“一菌一基因組”
微生物基因組研究正從群體分析走向單細胞解析。傳統方法以整體樣本提取為主,難以揭示微生物個體之間的差異,尤其對低豐度、未培養或異質性顯著的菌株識別效果有限。為推動對微生物個體的深入解析,團隊基于Scatcher 單細胞顯微光鑷操縱與分選儀,建立了完整的單細胞分選與擴增流程,實現了對目標微生物的精準獲取與全基因組擴增。
光鑷技術可利用激光實現非接觸、無標記、實時可視的單細胞操控,尤其適合微生物單細胞的精細操作。結合微流控芯片,能夠高效完成單個微生物的識別與轉移,推動微生物研究更進一步。在基因組擴增階段,MDA(Multiple Displacement Amplification,多重置換擴增) 技術利用 Phi29 DNA 聚合酶與隨機引物,可在等溫條件下對基因組進行高保真、高產量、均勻覆蓋的擴增,已成為單細胞全基因組擴增的常用方法。
DropFlex微液滴光鑷芯片抽真空處理
· 樣品加載至芯片樣品池
光鑷單細胞分選
· 沖洗芯片通道,生成油包水液滴
· 光鑷抓取單細胞 →分離至PCR管中
全基因組擴增(MDA)
· 制備擴增體系
· 多步反應完成DNA擴增
PCR驗證
· MDA產物稀釋
· 16SrRNAPCR驗證
2. 結果
Scatcher 單細胞顯微光鑷操縱與分選
借助Scatcher,光鑷能精準捕獲單個目標細胞,使其按設定路線移至出口,生成液滴后流入 PCR 管,為后續單細胞 MDA 擴增提供樣本。
圖2 光鑷捕獲釀酒酵母單細胞并實現分選
(A)光鑷捕獲釀酒酵母單細胞;(B)光鑷操縱釀酒酵母單細胞進入分選流道;(C)生成包含釀酒酵母單細胞的微液滴
MDA 擴增及 PCR 產物測序鑒定
單個微生物細胞基因組量少,無法滿足測序上機要求。MDA 技術利用隨機六聚體引物和 phi29 DNA 聚合酶在恒溫下反應,高效擴增基因組。擴增后的 MDA 產物稀釋 100 倍進行 16s rRNA/18s rRNA PCR 驗證,經電泳篩選出成功擴增的樣本,測序并通過 Blast 比對,確定產物分別為大腸桿菌和釀酒酵母,且無其他細胞污染。
圖3 16s rRNA/18s rRNA PCR產物電泳圖及Blast結果
小結
該方案展示了無需傳統培養手段,即可對復雜樣本中目標微生物個體實現“一菌一基因組”的研究路徑,突破了微生物生態學中“不可培養”這一長期難題。
Scatcher 單細胞顯微光鑷操縱與分選儀的高精度、無損操作與平臺集成特性,為開展微生物多樣性、進化、代謝機制等研究提供了強有力的技術支撐,推動微生物組研究從“群體平均”邁向“個體分辨”。
參考文獻:
[1]Keloth A , Anderson O , Risbridger D ,et al.Single Cell Isolation Using Optical Tweezers[J].Multidisciplinary Digital Publishing Institute, 2018(9).
[2]Liu B , Liu K , Wang N ,et al. Laser tweezers Raman spectroscopy combined with deep learning to classify marine bacteria[J].Talanta: The International Journal of Pure and Applied Analytical Chemistry, 2022:244.
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