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- 伍祖加 2016-12-28 00:00:00
- 是根據(jù)蛋白質(zhì)的電荷不同即酸堿性質(zhì)不同分離蛋白質(zhì)混合物的方法。 1、電泳:在外電場(chǎng)的作用下,帶點(diǎn)顆粒將向著與其電性相反的電極移動(dòng),這種現(xiàn)象稱(chēng)為電泳。電泳技術(shù)可用于氨基酸、肽、蛋白質(zhì)和核苷酸等生物分子的分析分離和制備。 區(qū)帶電泳是由于在支持物上電泳蛋白質(zhì)混合物被分離為若干區(qū)帶。 電泳前用緩沖液浸潤(rùn)薄膜或?yàn)V紙等支持物或用緩沖液直接配置成凝膠,將待分離的蛋白質(zhì)樣品加在它的一端或ZY,支持物的兩端與電極連接,通電電泳。電泳完畢,各個(gè)組分分布在不同的區(qū)域,用顯色劑(蛋白質(zhì)可用考馬斯亮藍(lán)或氨基黑等染色)顯色后可以顯示出各個(gè)組分。 氨基酸混合物特別是寡聚核苷酸混合物一次電泳往往不能完全分開(kāi)。這種情況可以將diyi次電泳分開(kāi)的斑點(diǎn)通過(guò)支持介質(zhì)間的接觸印跡轉(zhuǎn)移到第二個(gè)支持介質(zhì)上,旋轉(zhuǎn)90°,進(jìn)行第二次電泳。這種方法稱(chēng)為雙向電泳。 2、聚丙烯酰胺凝膠電泳:以聚丙烯酰胺凝膠為支持物,一般制成凝膠柱或凝膠板,凝膠是由相連的兩部分組成(小的部分是濃縮膠,大的部分為分離膠),這兩部分凝膠的濃度、緩沖液組分和離子強(qiáng)度、pH以及電場(chǎng)強(qiáng)度都是不同的,即不連續(xù)性。電泳時(shí)樣品首先在不連續(xù)的兩相間積聚濃縮而成很薄的起始區(qū)帶,然后再進(jìn)行電泳分離。 電泳有三種物理效應(yīng):1、樣品的濃度效應(yīng);2、凝膠對(duì)被分離分子的篩選效應(yīng);3、一般電泳分離的電荷效應(yīng)。 3、毛細(xì)管電泳:GX毛細(xì)管電泳、毛細(xì)管區(qū)帶電泳、自由溶液毛細(xì)管電泳、毛細(xì)管電泳,可分離氨基酸、肽、蛋白質(zhì)、DNA片段和核酸以及多種小分子,也可用于手性化合物的分離。 毛細(xì)管減少了由于熱效應(yīng)產(chǎn)生的許多問(wèn)題,可以提高熱散失,有助于消除由于熱引起的擴(kuò)散增加而造成的對(duì)流和區(qū)帶變寬,因此管中不需要加入穩(wěn)定介質(zhì)即可進(jìn)行自由流動(dòng)電泳。 電泳遷移引起溶液中荷電分子向相反電荷的電極移動(dòng),雖然被分析樣品因電泳遷移而分離,然而電滲作用使溶液向負(fù)極流動(dòng),而且電滲電流很強(qiáng),其速度一般比樣品的電泳速率答,因此所有的正、負(fù)離子和中性分子都被推向負(fù)極。對(duì)荷正電分子來(lái)說(shuō),電泳遷移和電滲流效果是一致的,而且移動(dòng)Z快,Z先達(dá)到負(fù)極。隨著被分離的分子接近負(fù)極,它們都將通過(guò)紫外檢測(cè)器并把信號(hào)傳遞給記錄儀。所得結(jié)果是被分離組分的紫外吸收對(duì)時(shí)間的峰譜。 4、等點(diǎn)聚焦(IEF)分離蛋白質(zhì)混合物是在具有pH梯度的介質(zhì)(如濃蔗糖溶液)中進(jìn)行。在外電場(chǎng)作用下各種蛋白質(zhì)將移向并聚焦在等于其等電點(diǎn)的梯度處,并形成一個(gè)很窄的區(qū)帶。 pH梯度制作一般利用兩性電解質(zhì),它是脂肪族多胺和多羧類(lèi)的同系物,它們具有相近但不相同的解離常數(shù)和等電點(diǎn)。在外電場(chǎng)作用下,自然形成pH梯度。 5、層析聚焦:根據(jù)蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)差異分離蛋白質(zhì)混合物的柱層析方法。 原理:當(dāng)用特種緩沖液滴洗填充在柱中的特種多緩沖交換劑時(shí),就會(huì)在層析柱中自上而下自動(dòng)的建立起連續(xù)的pH梯度;同時(shí)加在柱上端的蛋白質(zhì)樣品也隨多緩沖液的展開(kāi)按各自的等電點(diǎn)聚焦在相應(yīng)的pH區(qū)段。并在展開(kāi)過(guò)程中隨pH梯度下移,蛋白質(zhì)混合物的各組分先后從柱中流出,達(dá)到分離純化的目的。
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蛋白質(zhì)濃度測(cè)定的各種方法及原理是生物化學(xué)和分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)中的重要環(huán)節(jié)。蛋白質(zhì)濃度的準(zhǔn)確測(cè)定對(duì)于研究生物分子相互作用、蛋白質(zhì)功能和動(dòng)力學(xué)、以及生物樣品的分析和鑒定等方面都具有重要的意義。本文將介紹幾種常用的蛋白質(zhì)濃度測(cè)定方法及其原理,包括紫外吸收法、微量凱氏定氮法、雙縮尿法、Lowry 法和考馬斯亮藍(lán)法等。通過(guò)對(duì)這些方法的比較和分析,可以更好地了解它們的優(yōu)缺點(diǎn),以便根據(jù)實(shí)際實(shí)驗(yàn)需求選擇合適的方法來(lái)測(cè)定蛋白質(zhì)濃度。
①紫外吸收法
檢測(cè)原理:
蛋白質(zhì)分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸殘基的苯環(huán)含有共扼雙鍵,使蛋白質(zhì)具有吸收紫外光的性質(zhì)。吸收高峰在280nm處,其吸光度(即光密度值)與蛋白質(zhì)含量成正比。此外,蛋白質(zhì)溶液在238nm的光吸收值與肽鍵含量成正比。利用一定波長(zhǎng)下,蛋白質(zhì)溶液的光吸收值與蛋白質(zhì)濃度的正比關(guān)系,進(jìn)行蛋白質(zhì)含量的測(cè)定。
方法特點(diǎn):
優(yōu)點(diǎn):簡(jiǎn)便、靈敏、快速,不消耗樣品,測(cè)定后仍能回收使用。
缺點(diǎn):測(cè)定蛋白質(zhì)含量的準(zhǔn)確度較差,干擾物質(zhì)多。
干擾物:含有嘌呤、嘧啶、核酸等吸收紫外光的物質(zhì)。
檢出限:50~100ug蛋白含量。
適用范圍:適于用測(cè)定與標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)氨基酸組成相似的蛋白質(zhì)。
②微量凱氏定氮法
凱氏定氮法被國(guó)內(nèi)外視為蛋白質(zhì)含量的標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法,可作為衡量其他蛋白質(zhì)含量檢測(cè)方法準(zhǔn)確性的標(biāo)準(zhǔn)。
實(shí)驗(yàn)原理:
樣品與濃硫酸共熱,含氮有機(jī)物即分解產(chǎn)生氨(消化),氨又與硫酸作用,變成硫酸氨。經(jīng)強(qiáng)堿堿化使之分解放出氨,借蒸汽將氨蒸至酸液中,根據(jù)此酸液被中和的程度可計(jì)算得樣品之氮含量。
方法特點(diǎn):
優(yōu)點(diǎn):通用性強(qiáng),測(cè)定費(fèi)用低,易實(shí)現(xiàn),儀器簡(jiǎn)單且測(cè)定結(jié)果的重復(fù)性和重現(xiàn)性好。
缺點(diǎn):實(shí)驗(yàn)耗時(shí)長(zhǎng)、靈敏度低。
檢出限:0.2~1mg蛋白含量。
適用范圍:凱氏定氮法測(cè)的是總蛋白的量,一些非蛋白氮無(wú)法檢測(cè)出。
③雙縮尿法
實(shí)驗(yàn)原理:
雙縮尿(NH3CONHCONH3)是兩個(gè)分子經(jīng)180℃左右加熱,放出一個(gè)分子氨后得到的產(chǎn)物。在強(qiáng)堿溶液中,雙縮尿與CuSO4形成紫色絡(luò)合物,稱(chēng)為雙縮尿反應(yīng)。凡具有兩個(gè)酰胺基或兩個(gè)直接連接的肽鏈,或能過(guò)一個(gè)中間碳原子相連的肽鍵,這類(lèi)化合物都有雙縮尿反應(yīng)。紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比,與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無(wú)關(guān)。
方法特點(diǎn):
優(yōu)點(diǎn):適合檢測(cè)總蛋白質(zhì)的含量,操作簡(jiǎn)單、測(cè)量速度快。
缺點(diǎn):標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)必須使用代表性很強(qiáng)的樣品,需使用其他參考方法測(cè)出標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)中的蛋白質(zhì)總含量,故測(cè)定工作費(fèi)力費(fèi)時(shí)。不宜測(cè)定樣品種類(lèi)多、彼此差異大的樣品。
檢出限:測(cè)定蛋白質(zhì)含量測(cè)定范圍為1-20mg蛋白質(zhì)。
干擾物:硫酸銨、Tris緩沖液和某些氨基酸等。
適用范圍:常用于需要快速,但并不需要十分精確的蛋白質(zhì)測(cè)定。
④Lowry 法
Lowry 法是雙縮脲法的發(fā)展,結(jié)合了雙縮脲試劑和酚試劑與蛋白質(zhì)的反應(yīng),是最靈敏的蛋白質(zhì)測(cè)定方法之一,在生物化學(xué)領(lǐng)域得到廣泛的應(yīng)用,目前分為基本法和改良簡(jiǎn)易法,改良簡(jiǎn)易法可獲得與基本法相近的結(jié)果。
基本法實(shí)驗(yàn)原理:
顯色原理與雙縮尿法相同,但加入了Folin-酚酞試劑,以增加顯色量,從而提高檢測(cè)蛋白質(zhì)的靈敏度。這兩種顯色反應(yīng)產(chǎn)生深蘭色的原因是:①在堿性條件下,蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅結(jié)合生成復(fù)合物。②Folin一酚試劑中的磷鉬酸鹽一磷鎢酸鹽被蛋白質(zhì)中的酪氨酸和苯丙氨酸殘基還原,產(chǎn)生深蘭色(鉬蘭和鎢蘭的混合物)。在一定的條件下,蘭色深度與蛋白的量成正比。
特點(diǎn):
優(yōu)點(diǎn):靈敏度高。
缺點(diǎn):耗費(fèi)時(shí)間長(zhǎng),操作時(shí)間需精-準(zhǔn)控制,標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)繪制麻煩,專(zhuān)一性較差,干擾物質(zhì)比較多。
檢出限:可檢測(cè)的最-低蛋白質(zhì)量達(dá)5ug。通常測(cè)定范圍是20~250ug。
干擾物:酚類(lèi)、檸檬酸、硫酸銨、Tris緩沖液、甘氨酸、糖類(lèi)、甘油等。
適用范圍:除蛋白含量測(cè)定,也可用于酪氨酸和色氨酸的定量測(cè)定。
⑤考馬斯亮藍(lán)法
實(shí)驗(yàn)原理:
考馬斯亮藍(lán)G-250染料,在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結(jié)合,使染料的最-大吸收峰的位置(max),由465mm變?yōu)?95nm,溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樗{(lán)色。經(jīng)研究認(rèn)為,染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸(特別是精氨酸)和芳香族氨基酸殘基相結(jié)合。在595mm下測(cè)定的吸光度值A(chǔ)595,與蛋白質(zhì)濃度成正比。
方法特點(diǎn):
優(yōu)點(diǎn):靈敏度比Lowry高約4倍,高效率、檢測(cè)過(guò)程簡(jiǎn)便、只需要一種試劑,抗干擾能力強(qiáng)。
缺點(diǎn):測(cè)定誤差大,不適用于不同蛋白的檢測(cè)。
檢出限:其最-低蛋白質(zhì)檢測(cè)量可達(dá)1ug。
干擾物:干擾物質(zhì)少,但去污劑、TritonX-100、十二烷基硫酸鈉、0.1N的NaOH會(huì)干擾實(shí)驗(yàn)測(cè)定。
蛋白質(zhì)含量測(cè)定方法選擇
蛋白質(zhì)含量測(cè)定時(shí),考慮以下因素后選定適用的檢測(cè)方法。
①實(shí)驗(yàn)對(duì)測(cè)定所要求的靈敏度和精確度;
②蛋白質(zhì)的性質(zhì);
③溶液中存在的干擾物質(zhì);
④測(cè)定所要花費(fèi)的時(shí)間。
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