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硝酸還原酶的測定方法

24925c 2017-09-02 06:27:30 406  瀏覽
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  • 亂世浮生一聲嘆 2017-09-02 18:42:06
      硝酸還原酶是植物氮素代謝作用中的關鍵性酶,它與作物吸收和利用氮肥有關。NR作用于NO3-使其還原為NO2ˉ: NO3ˉ+NAD(P)H+H+→NO2ˉ+NAD++H2O 產生的NO2ˉ 可以從組織內滲透到外界溶液中,并積累在溶液中,測定反應溶液中NO2-含量的增加,即可表現NR活性的大小。 NO2ˉ含量的測定采用對氨基苯磺酸(sulfanil-amide)比色法。在酸性溶液中對氨基苯磺酸與NO2ˉ 形成重氮化合物,該重氮化合物在進一步與α-萘胺偶聯形成紫紅色的偶氮化合物。生成的紅色偶氮化合物在pH 7.5時540 nm處有Z大吸收峰,可用分光光度法測定其光吸收值,從而間接測得溶液中的NO2ˉ的量。這種方法非常靈敏,能測定每mL含0.5 μg的NaNO2。 硝酸還原酶活性可由產生的亞硝態氮的量表示。一般以 μg NO2ˉ /( gFW· h )為單位。 一、儀器、藥品與材料   (一)實驗材料 新鮮的植物葉片(如豌豆、王米、小麥、大豆等)。   (二)儀器與用品 50mL三角瓶、打孔器(直徑 0.5 cm)、真空泵、溫箱、分光光度計、移液管 (5mL 3 個、 1 mL 2 個、 2 mL 2 個)、天平 1 臺。   (三)試劑 1.1%對氨基苯磺酸:稱取1.0 g對氨基苯磺酸溶于 100 mL 3 mol/L HCl 中(25 mL 濃鹽酸加水定容至 100 mL ,即為 3 mol/L HCl )。 2.α-萘胺試劑:稱取0.2 g α-萘胺,用含1 mL濃鹽酸的蒸餾水溶解,再用蒸餾水稀釋至100 mL。 3.NaNO2 標準液:稱取 0.1 g NaNO2,用蒸餾水溶解后定容至100 mL。吸取其中5 mL,用蒸餾水稀釋至1 000 mL。此溶液每毫升含有5 μg NaNO2,用時再根據不同需要稀釋。 4.0.2 mol/L KNO3:稱取 KNO3 2.002 g,用蒸餾水溶解,移入100 mL 容量瓶中,用水定容至刻度,搖勻。 5.0.1mol/L磷酸緩沖液,pH 7.5:見附錄7。 二、實驗步驟 1.將新鮮取回的葉片洗凈,用吸水紙吸干,再用鉆孔器鉆成直徑約1 cm的圓片,Z后稱取等重的葉圓片兩份,每份約0.3~0.4g(或每份取50個圓片),分別置于含有下列溶液的50 mL三角燒瓶中:(1) 0.1mol/L磷酸緩沖溶液(pH 7.5)5 mL +蒸餾水5 mL(對照組);(2)0.1 mol/L磷酸緩沖溶液(pH 7.5)5 mL +0.2 mol/L KNO3 5 mL(實驗組)。將三角燒瓶置于真空干燥器中,接上真空泵抽氣,放氣后,圓片即沉于溶液中。如果沒有真空泵,也可以用20 mL注射器代替:將反應液及葉子圓片一起倒入注射器中,用手指堵住注射器出口小孔,然后用力拉注射器使其真空,如此抽氣放氣反復進行多次,即可使圓片中的空氣抽去而沉于溶液中。將三角燒瓶置于30℃溫箱中,暗中保溫30min后,分別吸取反應溶液1mL,用于測定NO2ˉ含量。 2.NO2ˉ含量測定 將步驟一中吸取的1 mL反應溶液置于一試管中,加入對氨基苯磺酸試劑2 mL及α-萘胺試劑2 mL,混合搖勻,靜置30min,立即用分光光度計測定520nm處的吸光度(OD)值。 3.繪制標準曲線 分別吸取不同濃度的NaNO2溶液(例如5、4、3、2、1、0.5 μg/mL)各1 mL于試管中,加入對氨基苯磺酸試劑2 mL及α-萘胺試劑2 mL,混合搖勻,靜置30min,立即520nm處的OD值。然后,以OD值為縱坐標,NaNO2濃度為橫坐標繪制OD值-濃度標準曲線,或者根據濃度與OD值關系直接計算回歸方程。 4.從標準曲線上查得實驗組與對照組反應液中的NaNO2含量,并計算硝酸還原酶活性: 酶活性(μg NaNO2/ g FW· h)=(C2-C1)×V/t×W 式中: C1——1 號三角瓶里 NaNO 2濃度(μg/mL) 。 C2——2 號三角瓶里NaNO 2濃度(μg/mL)。 V ——反應液總體積(mL) 。 t ——反應時間(h)。 W ——植物鮮重(g)。   注意事項:   1.硝酸還原酶容易失活,離體法測定時,操作應迅速,并且在4℃下進行。   2.硝酸鹽還原過程應在黑暗中進行,以防亞硝酸鹽還原為氨。   3.從顯色到比色時間要一致,顯色時間過長或過短對顏色都有影響。

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