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2025-01-21 09:35:14共聚焦高內涵成像分析系統: 共聚焦高內涵成像分析系統是一種集共聚焦顯微技術與高內涵分析于一體的先進設備。它利用激光作為光源，通過共聚焦原理實現高精度、高分辨率的細胞成像，同時結合自動化與高內涵圖像分析軟件，可對細胞形態、數量、蛋白表達等進行快速、準確、高通量的分析。該系統廣泛應用于藥物篩選、細胞生物學研究、疾病模型建立等領域，是生命科學研究中不可或缺的重要工具。其高精度成像與智能化分析能力，極大地提升了研究效率與數據準確性。

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細胞水平的創新藥物靶點研究

ImageXpress Micro 共聚焦高內涵成像系統針對活細胞或者固定細胞實驗，能提供更佳的定量分析能力。

徠卡顯微系統(上海)貿易有限公司 363
2022-04-27
共聚焦高內涵成像分析系統
【新年活動】精美禮品等你拿 —— 一同回顧 40 周年發展史

1983 年，哈佛大學 Harden McDonnel 教授創立了 Molecular Devices 公司，歲月更迭，風雨兼程， 2023年我們已歷經40載。

美谷分子儀器（上海）有限公司 3035
2023-01-21
細胞生長分析系統多功能酶標儀智能化共聚焦高內涵成像分析系統
細胞水平的創新藥物靶點研究

高內涵意味著豐富的信息，可以獲得包括單個細胞圖像和各項指標、細胞群體的統計分析結果、細胞數量和形態的改變、亞細胞結構的變化、熒光信號隨時間的變化、熒光信號空間分布的改變等各方面的信息。

貝克曼庫爾特商貿（中國）有限公司 446
2022-04-26
共聚焦高內涵成像分析系統徠卡顯微系統 THUNDER 3D高內涵活細胞培養成像系統
重磅消息：MD 發布新品——ImageXpress Confocal HT.ai 智能化共聚焦高內涵成像分析系統

 美谷分子儀器（上海）有限公司 486
2021-03-04
預算600萬元中國科學院分子細胞科學卓越創新中心采購頭激光共聚焦高內涵細胞成像分析系統

中國科學院分子細胞科學卓越創新中心激光共聚焦高內涵細胞成像分析系統建設項目招標項目的潛在投標人應在www.oitccas.com獲取招標文件，并于2025年05月30日 09點30分（北京時間）前遞

 儀器賞析家 35
2025-05-09
激光共聚焦高內涵細胞成像分析系統

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共聚焦高內涵成像分析系統問答

2023-08-21 11:41:24熱點應用丨OLED的光致發光和電致發光共聚焦成像: 要點光致發光和電致發光是有機發光二極管（OLED）視覺顯示發展的重要技術。與共聚焦顯微鏡相結合，使用RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀對OLED器件的光電特性進行成像研究。光譜和時間分辨成像獲得了比宏觀測試更詳細的器件組成和質量信息。介紹近年來，有機發光二極管（OLED）已成為高端智能手機和電視全彩顯示面板的領先技術之一1。使用量的快速增長是因為OLED提供了比液晶顯示器（LCD）更卓越的性能。例如，它們更薄、更輕、更靈活、功耗更低、更明亮2。在典型的OLED器件中，電子和空穴被注入到傳輸層中，然后在中心摻雜發光層中復合。這種復合產生的能量通過共振轉移到摻雜分子中，從而使其發光。OLED發光的顏色取決于發光層中所摻雜分子的化學結構。當新的有機電致發光器件開發出來時，可以利用光致發光（PL）和電致發光（EL）光譜來表征單個元件和整個器件的光電特性。在本文中，RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀用于表征四種成像模式下OLED器件的光電特性：PL、EL、時間分辨PL（TRPL）和時間分辨EL（TREL）。使用共聚焦顯微拉曼光譜儀來表征OLED的光譜和時間分辨特性獲得了比宏觀測試更詳細的信息。材料和方法測試樣品為磷光OLED器件，由圣安德魯斯大學有機半導體光電研究組提供。將樣品放置在冷熱臺（LINKAM）上，通過兩個鎢探針連接到器件電極上實現成像。使用RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀進行PL、EL、時間分辨PL（TRPL）和時間分辨EL（TREL）成像，如圖1。圖1 PL、TRPL、EL和TREL成像的實驗裝置。將裝載樣品的冷熱臺放置在顯微鏡樣品臺上，如圖2所示。對于PL測試，使用532 nm CW激光器和背照式CCD探測器；對于TRPL測試，使用外部耦合的EPL-405皮秒脈沖激光器、MCS模式和快速響應的PMT。對于EL測試，使用Keithley 2450 SMU向OLED器件加電壓，并用CCD探測器檢測；對于TREL測試，使用Tektronix 31102 AFG向OLED加一系列短脈沖電壓，使用MCS模式測試每個脈沖下的衰減。圖2 (a)安裝在RMS1000上的冷熱臺；(b) OLED器件電致發光寬場成像。測試結果與討論大面積光致發光和電致發光光譜成像OLED首次采用PL和EL光譜相結合的方法進行研究。當使用共聚焦顯微拉曼光譜儀成像時，可以表征材料在整個器件中的分布以及在發光強度和顏色均勻性方面的整體質量。圖3中的PL成像和相應的光譜提供了器件上4個區域發光層分布的信息，還顯示了電極的位置。圖3 (a)OLED器件的PL光譜強度成像；(b)a中標記的點1和點2的PL光譜。白色和灰色代表PL強度，顯示了有機發光層的位置。灰色區域為發光層被頂部電極覆蓋的位置。在頂部電極穿過發光層的地方，PL強度降低為未覆蓋區域強度的一半以下。這是由于頂部電極材料削弱了激光強度和光致發光強度。對于EL成像，鎢探針連接到與區域2相交的電極上。圖4中得到的EL圖像和相應的光譜表明了EL發光僅發生在區域2中的發光層與電極重疊的區域。在PL成像中，空間分辨率主要取決于樣品上激光光斑的大小。而在EL成像中，由于沒有激光，因此是通過改變共焦針孔直徑來改變空間分辨率（將針孔直徑減小到25 μm）。圖4 (a)OLED器件的EL光譜強度成像；(b)a中標記的點1和點2的EL光譜。EL強度在整個有源像素上不均勻，這對器件的質量有影響。在區域外邊緣有兩個（白色）垂直條帶，強度比其余部分強。此外，存在許多EL強度降低的非發光區域。這表明器件有缺陷，理想情況下，OLED將在每個像素上呈現出密集和均勻的發光。高分辨率光致發光和電致發光光譜成像為了進一步研究，使用PL和EL對EL有源像素上的較小區域（圖5a和圖5b）進行高分辨成像。圖5b網格內的上部區域是發光層與電極重疊的地方，下部區域是單獨的發光層。圖5c為 PL強度成像，再次表明被電極覆蓋的發光層PL強度小于未覆蓋的發光層。PL峰值波長圖像（圖5d）表明，有電極覆蓋的發光層與未覆蓋的發光層（611 nm）相比，PL發射峰發生紅移（620 nm）。峰值波長的變化表明在不同的區域中能級不同。圖5 (a) OLED器件電致發光寬場成像；(b)a網格內的高分辨率寬場成像；(c)PL強度成像；(d)相同區域的PL峰值波長成像；(e)EL強度成像；(f)相同區域的EL峰值波長成像。EL成像顯示，與其余部分相比發射強度較弱的缺陷（圖5e）波長發生明顯紅移（圖5f）。這是由于缺陷處的EL能帶的信號強度降低以及在662 nm處EL能帶信號強度同時增加引起的。另外，在EL有源區域的最底部的區域中，發生藍移，這與在PL圖像上看到的波長變化一致。高分辨率時間分辨光致發光和電致發光成像為獲得額外信息，在同一區域進行TRPL和TREL成像，如圖6所示。分別用激光脈沖和電脈沖，在MCS模式下測試614 nm處OLED的PL和EL衰減。利用單指數模型擬合衰減曲線。在圖6a的TRPL成像中，EL活性區域（上部區域）中的PL壽命比EL非活性區域（下部區域）中的PL壽命短大約200 ns。如圖6c所示，分別為800 ns和600 ns。這里觀察到與圖4中PL強度和波長圖像的類似梯度，沿圖向下方向的發射強度增強，并且發生了藍移。因此，根據TRPL數據可得：當光激發時，通過摻雜帶可獲得不同的能級。在圖6b中的TREL成像中，整個區域的壽命相似，大約為470 ns。發現EL壽命顯著短于相同區域的PL壽命。圖6 (a)OLED的時間分辨PL成像；(b)OLED的時間分辨EL成像；(c)a中選定區域的PL衰減曲線；(d)b中圖像的EL衰減曲線。結論RMS1000共聚焦顯微拉曼光譜儀用于測試OLED器件的PL、EL、TRPL和TREL成像。這些不同的成像模式提供了關于發光層和電極在整個器件中位置的詳細信息，在工作條件下器件的發光強度和顏色均勻性，以及關于PL和EL過程中帶隙能量的相對信息。參考文獻1. A. Salehi et al., Recent Advances in OLED Optical Design, Adv. Funct. Mater., 2019, 29, 1808803, DOI: 10.1002/adfm.201808803.2. J. M. Ha et al., Recent Advances in Organic Luminescent Materials with Narrowband Emission, NPG Asia Mater., 2021, 13, 1–36, DOI: 10.1038/s41427-021-00318-8.天美分析更多資訊

2023-05-26 10:03:56PhenoTron?-XYZ植物表型成像分析系統: PhenoTron?-XYZ植物表型成像分析系統，是易科泰生態技術公司基于國際先進光譜成像傳感器技術和自主研發的XYZ植物表型自動掃描平臺，設計生產的一款適用于實驗室或溫室高通量植物表型分析系統：國際知名高光譜成像技術公司Specim（芬蘭）高光譜成像傳感器Thermo-RGB?紅外熱成像與可見光成像融合分析技術，可實現遙控和在線圖傳FluorCam葉綠素熒光成像技術平臺采用STP（Sensor-To-Plant）技術和在線視覺監控可選配基于蒸滲儀技術的iPOT數字化培養盆，全面監測重量變化、土壤水分與溫度，及葉片溫度、葉綠素熒光、莖流、光合作用等生理生態參數可選配臺面式表型分析平臺，XYZ安裝在樣品平臺上，特別適合實驗室組培苗和種苗表型分析、種質資源檢測等應用于種苗與組培苗表型檢測、作物表型研究分析、植物生理生態研究、光合生理研究、種質資源檢測、脅迫與抗性評估與篩選等自左至右依次為：PhenoTron?-XYZ植物表型成像分析系統（可移動）、臺面式PhenoTron?-XYZ植物表型成像分析系統、綠豆種苗高光譜成像分析（PRI）主要技術指標：1)平臺采用STP技術，嵌入式主控系統，全中文操作界面，觸控屏+PC端GUI軟件雙重控制，可無線控制2)XYZ三軸全自動運行，精準定位掃描成像分析，運行精度1mm3)支持組合命令，可自定義Protocols，自動執行XYZ三軸移動、停止、光源開閉、快門觸發等4)支持位置記憶，可一鍵注冊、記錄、保存、讀取XYZ坐標信息，自動移動精準定位采集Thermo-RGB及FluorCam葉綠素熒光成像數據5)機器視覺監控：監控鏡頭經過算法校準，在線監視全域植物狀態和自動掃描成像，通過注冊XYZ自動定位采集RGB、紅外熱成像、FluorCam葉綠素熒光成像數據，并在線監控全過程6)標配臺面式XYZ三軸有效行程：X軸80cm，Y軸有效掃描長度180cm，Z軸可升降范圍30cm7)400-1000nm高光譜成像：a)光譜通道448，具備MROI功能，根據需求自由選擇感興趣光譜波段，減少數據冗余b)幀率：330FPS（滿幀），適應多種測量場景，尤其對容易擺動的植物，保證最佳的成像效果c)光譜分辨率 FWHM：5.5nmd)空間分辨率：1024像素e)信噪比400:1f)分析參數：可成像測量分析作物生化、生理指標如葉綠素含量、花青素含量、胡蘿卜素含量、光利用效率、葉綠素熒光指數、健康指數、覆蓋度等近百種參數8)900-1700nm高光譜成像：a)光譜通道224，具備MROI功能，根據需求自由選擇感興趣光譜波段，減少數據冗余b)幀率：670FPS（滿幀）c)光譜分辨率 FWHM：8nmd)空間分辨率：640像素e)信噪比1000:1f)分析參數：可成像測量分析NDNI歸一化N指數、NDWI歸一化水指數、MSI水分脅迫指數等9)SpectrAPP?高光譜成像分析軟件：a)具備偽彩色/灰度顯示、波段融合、ROI選區、光譜指數分析、光譜曲線繪制、光譜特征統計、直方圖統計、結果圖/表導出等功能b)可分析NDVI、PRI、DCNI、CRI、ARI、PSRI、NPQI、EVI、HI、WBI等數十種光譜指數，可根據需求定制添加光譜指數左：SpectrAPP?高光譜成像分析，右：綠豆幼苗葉綠素熒光成像分析10)Thermo-RGB成像：a)可見光-紅外熱成像雙鏡頭主機，出廠黑體多點校準并附校準證書，分辨率640×512像素b)測量溫度范圍-25℃－150℃，靈敏度0.03℃@30℃，c)紅外熱成像分析軟件具備調色板、差值技術、溫度范圍設置、等溫線模式、選區分析、溫度掃描、剖面溫度、時間圖、3D溫度圖、在線報告等功能d)Thermo-RGB?成像融合分析：可進行手動/自動ROI分析；光照/背光葉片長度、寬度、周長、凸包面積、圓度等形態分析；最高、最低、平均溫度、最大溫差、中位數等溫度分析；R/G/B、H/S/V、綠視率等顏色分析，具備溫度直方圖統計、路勁分析、溫度轉換、圖/表導出等功能e) Thermo-RGB遙控并可在線圖像無線傳輸，實時監測RGB及紅外熱成像畫面，測量最大、最小、中心點溫度信息等11)葉綠素熒光成像：a)專業高靈敏度葉綠素熒光成像CCD，幀頻50fps，分辨率720×560像素，像素大小8.6×8.3μmb)3色4組LED激發光源：620nm脈沖調制測量光，620nm紅色、5700K白色雙色光化學光源，735nm遠紅光用于測量Fo’等c)光化學光最大1000μmol.m-2. s-1可調，飽和脈沖3900μmol.m-2. s-1d)可自動運行Fv/Fm、Kautsky誘導效應、熒光淬滅分析、光響應曲線等protocolse)50多個葉綠素熒光自動測量分析參數，包括：Fv/Fm、Fv’/Fm’、Y(II)、NPQ、qN、qP、Rfd、ETR等，自動形成葉綠素熒光參數圖f) 自動同步顯示葉綠素熒光參數及參數圖、葉綠素熒光動態曲線、葉綠素熒光參數頻率直方圖g) 可通過注冊定位自動精準定位運行葉綠素熒光成像分析，單次成像面積35x46mmh)可對植物葉片、果實等不同組織進行葉綠素熒光成像分析i) 可選配GFP成像j) 配備便攜支架和葉夾，方便獨立使用

2023-05-23 12:34:04【會議預告】誠邀您參加上海站高內涵成像技術與應用研討會: 尊敬的老師：您好！我們誠摯地邀請您參加 5 月 26 日在上海舉辦的高內涵成像技術與應用研討會。本次應用研討會旨在與科學家面對面的交流，分享使用高內涵成像和分析技術的經驗，期望為相關研究領域提供有用的信息，拓展思路。高內涵成像分析系統是一種集高分辨率、自動化、智能化、高通量于一體的通用檢測技術平臺，其為細胞水平的研究分析提供了高效的解決方案，是創新藥物研究、中藥藥效、腫瘤研究、神經生物學、免疫學、干細胞研究等領域的重要研究工具。此次會議我們邀請企業、科研等專家學者共聚一堂，帶來 ImageXpress 高內涵成像分析系統在各研究領域最新進展和應用。我們期待您的參與，并再次感謝您的關注和支持！美谷分子儀器（上海）有限公司時間2023 年 5 月 26 日地點：上海浦東由由喜來登大酒店（上海市浦東新區浦建路 38 號）推薦到達方式：地鐵 4 號線塘橋站 3 號口右轉 20 米報名方式：掃一掃二維碼即可報名參會掃一掃二維碼即可報名參會

2022-12-04 19:40:01高內涵應用案例——線粒體動力學檢測和表型分析: 引言新陳代謝是生物體內進行的化學變化的總稱，是生物最基本的生命活動過程。細胞從環境汲取能量、物質，在內部進行各種化學變化，維持自身高度復雜的有序結構，保證生命活動的正常進行。作為細胞的“能量工廠”，線粒體在維持能量穩態方面發揮重要作用，可以調控蛋白質、脂質、溶質和代謝物產物的進出，并保護細胞質免受有害線粒體產物的影響。線粒體通過不斷的分裂和融合，維持線粒體形態、分布和數量，維持細胞穩態，該過程被稱為線粒體動力學。線粒體自噬是機體清除細胞內功能異常的線粒體的過程，是線粒體質量控制的主要機制。線粒體動力學的病理改變可導致生物能量功能受損和線粒體介導的細胞死亡，并與多種病理機制相關，包括缺血性心肌病，糖尿病，肺動脈高壓，帕金森氏病，亨廷頓氏病，骨骼肌萎縮癥、阿爾茨海默病等。線粒體大小和形狀取決于它們在細胞內的位置以及不同細胞對能量的需求。當線粒體發生損傷時，它的形態和完整性會發生改變，如線粒體的數量、大小、長度和形狀等。線粒體形態、結構和功能的檢測對于了解線粒體的穩態以及功能狀態有重要意義。高內涵成像分析系統非常適合進行線粒體表型和結構的研究。共聚焦成像和水鏡可以提高成像質量并更好地顯示線粒體結構，高內涵的圖像分析工具可以幫助科研工作者獲得不同表型的數字特征，線粒體表型和結構重排的分析模塊可用于線粒體動力學為基礎的細胞研究。結果展示使用不同濃度的化合物，包括氯喹（抑制線粒體循環），魚藤酮（氧化磷酸化抑制劑）和纈氨霉素（鉀離子載體）處理 PC12（人神經母細胞瘤細胞）。將活細胞用線粒體染料 MitoTracker Orange 和 Hoechst 進行染色，利用 ImageXpress Micro Confocal 系統（Molecular Devices）進行成像，使用共聚焦模式和 40X 水鏡拍攝活細胞的圖像，分辨單個線粒體并檢測線粒體形態變化。使用 MetaXpress 高內涵圖像采集和分析軟件中的 Custom Module Editor（自定義模塊編輯器）分析圖像，使用“Granularity”模塊和“Find Fibers”模塊識別圓形顆粒和細長的線粒體（圖 1）。圖 1 .線粒體形狀的表型分析。Molecular Devices 高內涵成像分析系統適用于各種細胞模型中化合物的藥物開發或毒性評估。不同化合物處理會導致線粒體形態變化，膜電位的損失、以及細胞的程序性死亡等。MetaXpress 軟件非常適合進行線粒體形態的測定，可以定義每個對象的數量、面積、強度、長度和形狀（表1，2）。使用具有共聚焦模式的 40X 水鏡對細胞進行成像，MetaXpress 自定義模塊編輯器分析圖像（圖 2）。這些檢測結果可以計算劑量反應和各種化合物的有效濃度，以及用數字來表征線粒體結構動力學（圖 3）。圖 2 .化合物對線粒體的作用。使用MitoTracker Orange對線粒體進行染色（黃色），對照組（A）、纈霉素（B）、魚藤酮（C）。使用特定濃度的化合物（氯喹，魚藤酮和纈氨霉素）處理 PC12 細胞，對細胞進行染色和成像。通過圖像分析將線粒體結構確定為“纖維”（頂部）或“顆粒”（中部），底部為線粒體染色后熒光強度的變化。EC50的值取決于四個濃度依賴性復本和參數曲線的擬合（圖 3）。圖 3 .使用氯喹（綠色），魚藤酮（紅色）和纈氨霉素（藍色）處理 PC12 細胞。EC50的值取決于四個濃度依賴性復本和參數曲線的擬合。在分析過程中，我們比較了水鏡和空氣鏡對圖像質量和分析的影響。結果顯示，使用水鏡可以提高圖像質量，并且通常會導致 Z' 值增加（表 3 ）。圖 4 顯示了使用自定義模塊編輯對線粒體表型進行計數和分析，以評估線粒體的健康、代謝、循環、復合效應和疾病狀態等。并且，自定義模塊編輯可以針對特定的細胞類型或疾病模型進行進一步的調整和修改。表 1 .用圖 3 所示的曲線定量 EC50。表 2 .不同的對照和化合物處理方法的比較。上面四列數據分別是對照，10 um 的氯喹，300 nm 的魚藤酮，和 10 nm 的纈氨酸霉素。表 3 .與空氣鏡相比，水鏡可以提高圖像質量，獲得更高的Z’值。圖 4 .自定義模塊編輯器（CME）。總結Molecular Devices 高內涵成像分析系統適用于各種細胞模型中化合物的藥物開發或毒性評估。使用高內涵成像和高級圖像分析的線粒體動力學分析方法不僅可以量化線粒體的表型變化，而且這種多參數方法也可用于研究正常和病理結構變化以表征疾病模型或復合效應。主要特點獲得高質量的圖像，更好地顯示線粒體形狀和結構的變化以更有效、更精確的方式量化和測量線粒體的表型變化了解疾病的機制并評估各種細胞模型中的化合物毒性參考文獻：[1]. Gottlieb RA, Bernstein D. Mitochondrial remodeling: Rearranging, recycling, and reprogramming. Cell Calcium, 2016, 60(2): 88–101.[2]. Yoon Y, Krueger EW , Oswald BJ , et al. The Mitochondrial Protein hFis1 Regulates Mitochondrial Fission in Mammalian Cells through an Interaction with the Dynamin-Like Protein DLP1. Molecular & Cellular Biology, 2003, 23(15):5409-5420.[3]. McLelland GL, Soubannier V, Chen CX, et al. Parkin and PINK1 function in a vesicular trafficking pathway regulating mitochondrial quality control. Embo Journal. 2014, 33(4):282-295.[4]. Twig G, Elorza A, Molina AJ, et al. Fission and selective fusion govern mitochondrial segregation and elimination by autophagy. Embo Journal. 2008, 27:433–446.[5]. Longo DL , Archer SL . Mitochondrial dynamics--mitochondrial fission and fusion in human diseases. New England Journal of Medicine, 2013, 369(23):2236-2251.[6]. Qi X, Disatnik MH, Shen N, et al. Aberrant mitochondrial fission in neurons induced by protein kinase C{delta} under oxidative stress conditions in vivo. Molecular biology of the cell. 2011, 22(2):256–265.[7]. Yu T, Sheu SS, Robotham JL, Yoon Y. Mitochondrial fission mediates high glucose-induced cell death through elevated production of reactive oxygen species. Cardiovascular Research. 2008, 79:341–351.[8]. Ong SB, Subrayan S, Lim SY, et al. Inhibiting Mitochondrial Fission Protects the Heart Against Ischemia/Reperfusion Injury. Circulation, 121(18), 2012-2022.[9]. Suen DF, Norris KL, Youle RJ. Mitochondrial dynamics and apoptosis. Genes Dev. 2008, 22:1577-590.[10]. Konopka AR, Suer MK, Wolff CA, et al. Markers of Human Skeletal Muscle Mitochondrial Biogenesis and Quality Control: Effects of Age and Aerobic Exercise Training. The Journals of Gerontology. 2014, 69(4):371-378.

2023-08-21 11:50:20激光共聚焦熒光顯微鏡活體熒光物質檢查: 激光共聚焦顯微鏡，簡稱CLSM（Confocal Laser Scanning Microscopy），是一種利用激光共振效應進行成像的顯微鏡。它通過使用激光束掃描樣品的不同層面，將所得到的圖像合成成一幅清晰的三維圖像。與傳統顯微鏡相比，激光共聚焦顯微鏡具有更高的分辨率和更強的穿透能力，可以觀察到更加細微的結構和更深層次的物質。在活體熒光物質的檢查中，激光共聚焦顯微鏡發揮了重要的作用。通過標記活體細胞或組織的特定結構或分子，激光共聚焦顯微鏡可以實時觀察到這些結構或分子的活動和分布情況。在生物醫學領域，它可以用于觀察細胞的生長、分裂和死亡過程，研究細胞信號傳導和分子交互作用等。在藥物研發中，它可以用于觀察藥物在活體細胞或組織中的分布情況，評估藥物的療效和毒性。此外，在神經科學領域，激光共聚焦顯微鏡可以用于觀察神經元的活動和連接，揭示大腦的工作機制。 NCF950激光共聚焦顯微鏡較寬場熒光顯微鏡的優點：l 能夠通過熒光標本連續生產薄（0.5至1.5微米）的光學切片，厚度范圍可達50微米或更大。（主要優點）l 控制景深的能力。l能夠從樣品中分離和收集焦平面，從而消除熒光樣品通常看到的焦外“霧霾"，非共焦熒光顯微鏡下無法檢測到。（最重要的特點）l 從厚試樣收集連續光學切片的能力。l 通過三維物體收集一系列圖像，用于二維或三維重建。l收集雙重和三重標簽，精確的共定位。l 用于對在不透明的圖案化基底上生長的熒光標記細胞之間的相互作用進行成像。l 有能力補償自發熒光。耐可視共聚焦成像效果圖尼康共聚焦成成像效果圖NCF950激光共聚焦顯微鏡應用，共聚焦顯微鏡在以下研究領域中應用較為廣泛：1、細胞生物學：細胞結構、細胞骨架、細胞膜結構、流動性、受體、細胞器結構和分布變化、細胞凋亡；2、生物化學：酶、核酸、FISH、受體分析3、藥理學：藥物對細胞的作用及其動力學；4、生理學：膜受體、離子通道、離子含量、分布、動態；5、遺傳學和組胚學：細胞生長、分化、成熟變化、細胞的三維結構、染色體分析、基因表達、基因診斷；6、神經生物學：神經細胞結構、神經遞質的成分、運輸和傳遞；7、微生物學和寄生蟲學：細菌、寄生蟲形態結構；8、病理學及病理學臨床應用：活檢標本的快速診斷、腫瘤診斷、自身免疫性疾病的診斷；9、生物學、免疫學、環境醫學和營養學。NCF950激光共聚焦顯微鏡配置NCF950激光共聚焦配置表激光器激光405 nm、488 nm、561 nm、640 nm探測器波長：400-750nm，探測器：3個獨立的熒光檢測通道；1個DIC透射光檢測通道掃描頭最大像素大小：4096 x 4096 掃描速度：2 fps（512 x 512像素，雙向），18 fps（512 x 32像素，雙向），圖像旋轉: 360°掃描模式X-T, Y-T, X-Y, X-Y-Z, X-Y-Z-T針孔無級變速六邊形電動針孔；調節范圍：0-1.5毫米共焦視場φ18mm內接正方形圖像位深12bits配套顯微鏡NIB950全電動倒置顯微鏡光學系統NIS60無限遠光學系統（F200)目鏡(視野)10×(25)，EP17.5mm，視度可調-5～+5，接口Φ30觀察鏡筒鉸鏈式三目觀察鏡筒，45度傾斜，瞳距47-78mm，目鏡接口Φ30，固定視度；1）目/攝切換：（100/0,50/50,0/100)；2）目視/關閉目視/可調焦勃氏鏡NIS60物鏡10×復消色差物鏡，NA=0.45 WD=4.0 蓋玻片=0.1720×復消色差物鏡，NA=0.75 WD=1.1 蓋玻片=0.1760×半復消色差物鏡，NA=1.40 WD=0.14 蓋玻片=0.17 油鏡100×復消色差物鏡，NA=1.45 WD=0.13 蓋玻片=0.17 油鏡物鏡轉換器電動六孔轉換器（擴展插槽），M25×0.75聚光鏡6孔位電動控制：NA0.55，WD26；相襯(10/20,40,60選配）DIC（10X，20X/40X）選配.空孔照明系統透射柯拉照明，10W LED照明；落射照明：寬場光纖照明6孔位電動熒光轉盤（B，G，U標配）；電動熒光光閘；中間倍率切換手動1X，1.5X、共焦切換機身端口分光比：左側:目視=100：0；右側:目視=100：0；平臺電動控制：行程范圍130 mm x100 mm （臺面325 mm x 144 mm ）最大速度：25mm/s；分辨率：0.1μm - 重復精度：3μm。機械可調樣品夾板調焦系統同軸粗微動升降機構，行程：焦點上7下2；粗調2mm/圈，微調0.002mm/圈；可手動和電動控制，電動控制時，最小步進0.01um；DIC插板10X，20X，40X插板；可放置于轉換器插槽；選配控制搖桿，控制盒，USB連接線軟件軟件：NOMIS Advanced C圖像顯示/圖像處理/分析2D/3D/4D圖像分析，經時變化分析，三維圖像獲得及正交顯示，圖像拼接，多通道彩色共聚焦圖像