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- Pengspin 2016-06-10 00:00:00
- 顯微鏡視野的明暗程度可用反光鏡和光圈來調節。比如需要明亮的視野時,使用凹面反光鏡和輔助光源并調節光圈大小,使強光通過;反之則是弱光通過。
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- 酷酷坤坤ok 2016-06-10 00:00:00
- 顯微鏡觀察細胞,調節明暗一般有兩種方法: 1.調節光圈大小來調節明暗: 1)大光圈:光線強,視野亮,光線過弱需要強光時可以用大光圈。 2)小光圈:光線弱。視野暗,光線過強需要弱光時可以用小光圈。 2.調節反光鏡來調節明暗:反光鏡有平面鏡和凹面鏡兩種。 1)平面鏡:反射的光線較弱,如果光線過強需要弱光時可以用平面鏡。 2)凹面鏡:反射的光線較強,如果光線過弱需要強光時可以用凹面鏡。
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倒置熒光顯微鏡MF52-N應用于細胞
幾年來科學家正在開發細胞療法,希望能治療多種疾病和疑難雜癥。這就需要質量控制和各種有關儀器設備來支持免疫療法和再生醫學的發展。近期,明美上海區域安裝倒置熒光顯微鏡MF52-N,觀察mcherry熒光,應用于細胞治療。
倒置熒光顯微鏡MF52-N下,細胞均勻分布,生長狀態良好。作為一種新興的治療方式,細胞治療在眾多疾病特別是癌癥、遺傳疾病、傳染病的治療中展現出良好的效果。而明美倒置熒光顯微鏡MF52-N為治療提升效率與提高準確性。
倒置熒光顯微鏡MF52-N配備數顯LED熒光模塊,可實現三通道熒光激發,可選BGUYR等不同通道,激發光強直觀可視并獨立記憶,可用于細胞培養、生物制藥、醫療檢測等科研應用。
您若對倒置熒光顯微鏡感興趣或存在疑問,歡迎與我們聯系,我們將竭誠為您服務!
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- 免疫熒光細胞用什么顯微鏡觀察?
倒置熒光顯微鏡下的免疫熒光細胞:探索微觀世界的奧秘
顯微鏡觀察免疫熒光細胞是一種重要的實驗方法,用于研究細胞內蛋白質、核酸等成分的表達、功能和相互作用,目前,免疫熒光顯微鏡已經成為生物學研究中不可或缺的工具之一。
在倒置熒光顯微鏡觀察細胞時,需要選擇合適的顯微鏡參數,以確保觀察的準確性和穩定性。例如,光源的種類、顯微鏡的分辨率、物鏡放大倍數和熒光通過率等因素。此外,在進行免疫熒光顯微鏡觀察細胞時,需要選擇合適的熒光強度和熒光顏色,以避免對觀察結果的干擾。
倒置熒光顯微鏡MF52-N采用無限遠光學設計和數顯LED熒光模塊,光路經過深度優化,能提供簡單易用的熒光激發和高質量的相襯、熒光和明場成像,可選雙光路、一體供電、人走燈滅,廣泛用于細胞培養、生物制藥、醫療檢測等領域。
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- 透射電子顯微鏡怎么調節
透射電子顯微鏡怎么調節:全面解析與操作步驟
透射電子顯微鏡(Transmission Electron Microscope,簡稱TEM)作為一種高分辨率的成像工具,廣泛應用于生物學、材料科學等領域,能夠觀察到細胞內部結構及微觀材料的原子級別細節。要發揮TEM的大效能,精確的調節操作至關重要。本文將深入探討透射電子顯微鏡的調節方法,幫助用戶掌握如何通過細致的操作,優化顯微鏡的性能,確保高質量的成像結果。
1. 調節透射電子顯微鏡的基本步驟
透射電子顯微鏡的調節過程主要包括對光學系統、電子束、樣品臺及成像系統的精細調節。需要確保顯微鏡的電源、真空系統及冷卻系統工作正常,以為顯微鏡的調節和成像提供穩定的基礎。之后,用戶需根據不同實驗需求進行以下調整。
1.1 光學系統的調節
光學系統的調節是透射電子顯微鏡使用過程中基礎的一步。通過調節電子槍和透鏡的焦距,確保電子束集中在樣品上,得到清晰的成像。在調節時,需要注意避免電子束的散射或聚焦失真,這對后續觀察質量影響甚大。
1.2 樣品準備與臺面調節
樣品的放置位置至關重要。首先需要確保樣品處于適當的高度和角度,通常通過樣品臺的微調旋鈕來實現。此時,用戶還應確保樣品表面盡可能平整,避免因表面不平而引起的成像模糊。
1.3 掃描電流與曝光時間的調整
掃描電流和曝光時間的調整有助于提高成像的清晰度和對比度。適當的曝光時間可以避免圖像過亮或過暗,從而獲得更精細的細節。而電流過大會導致樣品過熱,因此在調整電流時應謹慎,以保證樣品的完整性。
2. 細致調節技巧與常見問題
雖然透射電子顯微鏡的操作過程較為繁瑣,但掌握一些細致的調節技巧,可以有效提升成像質量。以下是常見的幾種調節技巧:
2.1 電子束的穩定性
保持電子束的穩定性對于獲得清晰圖像至關重要。用戶可以通過微調電子束的聚焦,確保電子束均勻分布到樣品上。定期校正電子槍,尤其是對于高分辨率成像任務,可以有效防止因電流不穩定造成的圖像失真。
2.2 灰度調節與對比度優化
灰度調節有助于提升圖像的對比度,特別是在觀察樣品的細節時尤為重要。通過細微調整灰度級別,您可以突顯樣品的微觀結構。而對比度的優化,尤其是在處理不同樣品材料時,可以幫助提高成像清晰度,使得微細結構更加顯著。
3. 高級調節操作與注意事項
對于高級用戶來說,透射電子顯微鏡的調節不僅僅局限于基本操作,更多的是對電子束性質、圖像處理算法等方面的調整。使用掃描透射電子顯微鏡(STEM)時,必須關注圖像的襯度調節與成像模式切換。此時,用戶需要深入理解不同模式下的優缺點,選擇適合當前樣本和實驗要求的設置。
4. 結語
透射電子顯微鏡的調節不僅依賴于理論知識的掌握,還需要實踐經驗的積累。通過合理的調整光學系統、樣品臺、掃描電流和曝光時間等多方面因素,用戶能夠有效提高成像質量,實現的微觀分析。作為一項高度精密的科學儀器,透射電子顯微鏡的操作細節和調節技巧在不同應用場景中各具挑戰,只有通過不斷實踐,才能達到佳的顯微成像效果。
- 熒光觀察用什么顯微鏡?
一、熒光基礎知識
在顯微成像中,熒光指的是一種光致發光現象,某些分子能吸收特定波長的光線,然后再發射出其他波長的光線的物理現象,這種分子一般稱為熒光團。通常情況下,由于斯托克斯位移,熒光團的激發峰值和發射光譜之間存在差值,發射光線能量低于吸收光線,波長比激發光更長。
熒光現象有兩種:自發熒光與繼發熒光。自發熒光也稱固有熒光,是指經照射后就能發出熒光;繼發熒光也稱二次熒光,物質經照射后不能或只能部分發生微弱熒光,需先用熒光染料標記處理,再經照射才能發生熒光。目前在熒光顯微技術中,主要利用的是繼發熒光現象。
念珠藻葉綠體的自發熒光,明美MF52-N拍攝熒光產生包含激發和發射兩個過程,在熒光顯微技術中具體體現為以下幾個關鍵部件:
(1)激發光源:主要包含以下兩個指標
? 光源光譜覆蓋發射光譜:熒光團在特定波段范圍才能被大部分激發,因此激發光源的光譜范圍要能匹配所觀察樣本中的熒光團激發特征。
? 發射光譜波段的強度:熒光信號一般較弱,需要使用較高亮度的激發光以產生較強信號的發射熒光信號。
(明美-四通道LED光源MG120,寬光譜 + 高光功)
(2)激發塊:用于形成特異性激發/發射的一組濾光片,一般包含以下三個
? 激發濾光片EX:濾過光源中特定波段的光,用以激發樣本中特定染料
? 發射濾光片EM:允許熒光團發射的特定波段的光通過
? 二向分色鏡DM:反射激發波段的光,透過發射波段的光。透射熒光顯微鏡沒有這個濾光片,但目前主流都是落射熒光顯微鏡,會有二向分光鏡。
(明美可定制適配四家品牌,不同波段需求的激發塊)
二、熒光顯微成像的應用
熒光顯微鏡利用自發熒光或繼發熒光現象,廣泛用于生物(醫學)、礦物、材料科學等領域的顯微熒光觀測。①在生物學領域,主要借助熒光染料標記,可準確和詳細地識別細胞和亞微觀細胞成分。②在礦物學領域,通常用于研究有自發熒光特性的物質,如石油、煤炭、氧化石墨烯等礦物。③在材料科學,可用于紡織工業或造紙業來分析基于纖維的材料,包括紡織品和紙張,在半導體領域,也可用來觀測具有熒光特性的材料如磁珠等。
明美MF31-LED熒光顯微鏡觀察SBS改性瀝青
(MF43-N拍攝的磁珠熒光圖片)
熒光顯微技術在生物學領域中應用是廣泛也是復雜的,主要是對細菌、細胞、組織或小型生物(如斑馬魚等模式生物)進行標記成像,它的微觀層面都是通過熒光染料對分子層面進行標記。從熒光染料的選擇看,通常需要考慮幾個因素,一是熒光染料標記的位置,二是該染料對應的激發特征,包括吸收光譜特征和發射光譜特征。借助熒光染料,熒光顯微技術不只局限于蛋白質,它還可以對核酸、聚糖進行染色,甚至鈣離子等非生物物質也可以檢測。以下根據染料結合的位置列舉了一些常見的熒光染料及應用范圍:
FITC熒光染色,MF52-N拍攝
(1)免疫熒光(IF):主要標記的是蛋白質。免疫熒光技術利用抗體可以和相應抗原特異性結合的特性,主要有兩種方式:一是利用內源熒光信號,即通過克隆技術用遺傳學方法將熒光蛋白與目的蛋白相連,如GFP等;二是利用熒光標記的抗體與目的蛋白特異性結合。
? FITC(異硫氰酸熒光素):是一種有機熒光染料,495/517 nm為該染料激發/發射峰值,可以和蛋白質上的基團結合,主要用于免疫熒光和流式細胞術中。
? TRITC(四甲基羅丹明-5(6)-異硫氰酸):屬于羅丹明家族的衍生物,550/573 nm為該染料激發/發射峰值,可與蛋白質結合。
? 花箐染料(cy3、cy3.5、cy5、cy5.5、cy7等系列):非特異性吸附少,消光系數高,熒光量子產率高,從而讓標記顯影時背景弱,信號強。除細胞顯影外,它們也常用于生物篩選、蛋白免疫印跡、生物醫學顯影、小動物體內成像等。
? Alexa Fluor系列:屬于帶負電荷且親水的熒光染料系列,是不同基礎熒光物質的磺化形式。這些產品標識涵蓋了對應的激發波長,相比于FITC等染料,具有更好的穩定性和熒光亮度。
DAPI熒光染色,MF52-N拍攝(2)DNA染色:主要標記核酸。同蛋白質一樣,對核酸進行標記與研究同樣有重要意義,如對細胞核(主要成分為核酸)進行染色標記可以判斷細胞的數量和位置。
? DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚):當DAPI與雙股DNA結合時,在358nm處有一個吸收峰值,在461nm處有一個發射峰值,其發射光的波長范圍含蓋了藍色至青綠色。DAPI也可與RNA結合,但產生的熒光強度不及與DNA結合的結果。DAPI可以透過完整的細胞膜,因此被廣泛用于活細胞和固定細胞的染色。
? Hoechst(33258、33342、34580):這三種染料都可在350nm左右的紫外光激發,在461nm處發出藍靛色熒光。與DAPI類似,Hoechst可透過完整細胞膜,被廣泛用于活細胞和固定細胞染色。
? PI(碘化丙啶):是一種不能透過細胞膜的DNA染色劑。與核酸結合后,激發波長為538 nm,發射波長為617 nm。由于該染色劑無法進入完整的細胞中,因此該染色劑常用于區分細胞群中的活細胞和死細胞。
Fura2鈣離子探針做的研究圖片, 引自公開文獻
Front. Neural Circuits 11:11. doi: 10.3389/fncir.2017.00011(3)離子成像:研究細胞中各種離子的流動與分布對細胞活動的深入理解有重要作用。通過各種離子指示劑,如鈣離子、鈉離子、鎂離子、鋅離子等指示劑與離子結合形成熒光團,利用光譜特征檢測對應離子的分布狀態。
三、熒光顯微成像的挑戰
應用熒光顯微技術進行成像的過程中,不僅要考慮成像的質量,包括分辨率、對比度、熒光信號強弱、背景光、多通道成像等,還要考慮熒光染料、光照等對樣本的影響,比如熒光染料毒性、光毒性、光漂白等。以下列出了熒光顯微技術應用中的常見挑戰與應對方法:
汞燈需搭配帶計時器的復雜控制箱來使用(1)激發光源選擇和使用。傳統熒光成像使用的是高壓汞燈,具有特異性的光譜特征和較高的光強,但使用有很多麻煩,首先需要預熱,然后光強靠ND濾鏡調節,壽命較短可能就200小時,在壽命用完前還會有光強衰減問題,需要調整ND濾鏡,替換燈泡后需要重新校中。目前很多應用都用LED熒光光源取代汞燈作為熒光光源,如寬光譜大功率LED熒光光源MG-100,壽命長單個可以頂50個汞燈,光強更穩定可控,并且可以即開即用,省事省心。
明美可定制適配四家品牌的濾光片組(2)濾光片質量和匹配度。激發塊中的濾光片質量會影響激發光和發射光的透過率,影響熒光效率并帶來雜散光和背景噪聲問題。同時,濾光片的參數能否匹配染料的激發峰和發射峰,也會對熒光效果產生重大影響。對于簡易熒光需求,明美建議使用數顯熒光模塊,整合光源和BGU等常用激發塊,可以為四家品牌顯微鏡升級熒光觀察,簡單易用效果好。對于專業熒光需求,明美提供匹配四家品牌主流熒光顯微鏡的激發盒和濾光片組,可按需定制不同濾光片組合,如鈣離子Fura2探針需要用U激發G發射,一般的U激發B發射濾光片組并不適合。
(MF43-N+MC50-S拍攝的小鼠腦片熒光圖像)
(3)光毒性與熒光染料毒性:在生物學領域的熒光成像中,需考慮光毒性與熒光染料毒性對樣本的影響,如細胞內的有機分子在與氧反應時吸收光發生分解并產生自由基,部分熒光染料本身也能產生自由基,這是引起細胞等生物樣本損傷的主要來源。通常的應對思路是:①使用具有較低能量(波長較長)激發光譜的熒光染料;②盡可能低的光強和盡可能短的激發時間,需要在成像質量與樣本健康之間保持平衡;③降低幀速率,尤其在長時間的熒光成像中,這種情況需要提高相機的靈敏度,保證捕獲微弱的熒光信號。
(單通道熒光拍攝,經軟件合成多色熒光圖像)
(4)多色熒光成像:在生物學領域應用較多,尤其是在對活細胞標記成像時,需同時對多種物質進行標記,并在一個圖像中顯示,而大多數熒光染料具有寬發射光譜,在使用多種染料標記時會出現熒光光譜重疊現象。對于多色熒光成像,有兩種應對思路,一是針對每種染料使用對應的單通道窄帶濾光片,后通過軟件進行合成,這種方式對成像速度及軟件圖像處理提出較高要求;二是使用寬光譜光源同時激發,選用雙通濾光片或多通濾光片,這種濾光片的的特點是允許兩種或以上波段熒光信號通過,可實現一組濾光片同時觀察兩種或以上熒光染料,這種方式要求相鄰的發射光譜范圍沒有重疊,所得到的熒光信號之間能較好的被區分。
(雙通濾光片熒光拍攝,鏡下可同時觀察到B\G兩種熒光信號)
來源:https://www.mshot.com/article/1527.html
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納米銀粒子很小,才幾十納米,通常會用到電子顯微鏡。不過,此次,香港中文大學老師只需要觀察納米銀顆粒分布,不需要清晰觀察細節,同時后期需升級熒光觀察,因此深圳區域工程師推薦了金相顯微鏡MJ43BD搭配2000萬像素顯微鏡相機MDX10,現場演示了金相樣品效果,獲得用戶認可。
金相顯微鏡MJ43,配備半復消色差的明暗場物鏡和六孔轉盤式落射模塊,具備良好的成像質量和擴展能力,對于功能和擴展要求更高的老師很適合,標配支持明場和暗場觀察,根據工業和材料學的不同應用,還能通過模塊化組合,實現偏光、熒光、DIC等觀察方式。
金相顯微鏡MJ43可應用于半導體、FPD、電路板、金屬材料等制造領域,適用于教學及研究方面
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