diyi，和樣品預處理時間有關。以氫氧化鎳為例，它的處理時間至少需要8小時，由于其干燥過程容易板結，故處理溫度不宜過高（一般90度），這樣就導致處理溫度不夠，用加長時間來彌補。  
第二，和樣品的處理溫度有關。以氧化鋁為例，它的處理溫度一般是300°C。若降低其處理溫度，容易造成測試結果偏小，且BET測試曲線線性很差。  
第三，和處理時的真空度有關。真空度偏低，使得真空室的蒸汽的飽和蒸汽壓偏高，同時樣品表面處理不干凈，這樣都造成測試結果偏小（個別樣品除外）。  
第四，和稱樣量多少有關。樣品量的多少和他自身的比表面的大小有關的，一般比表面越大，稱樣量越少，反之越多。但是在樣品管體積一定的情況下，量太多容易造成管路堵塞；太少容易出現脫附峰拖尾。所以選擇合適的稱樣量是很有必要的。  
第五，和測試樣品的自身吸附特性有關。大部分樣品處理后的比表面都是大于處理前的比表面，有的樣品不處理的時候比表面很大，處理后反而變小，  
第六，和儀器的類型有關，一般來說，靜態容量法測得結果比動態色譜法測得的結果更加準確，這個是由于前者測得是吸附數據，后者得到的是脫附數據。若樣品中存在不規則的孔，氮分子進入孔內后，脫附時，由于出口很小，就有可能不出來，造成脫附的數據失真。  
具體的動態法和靜態法的區別.
BET比表面積測試是由3H-2000系列BET比表面積測試儀進行測試的，3H-2000系列BET比表面積測試儀獲得10項技術ZL,獲得國家創新基金支持,測試精度高,重復性好.

（來源：貝士德儀器科技（北京）有限公司）

在決定實時熒光定量PCR檢測靈敏度、準確性和可靠性的眾多因素中，模板質量是決定重復性和生物學相關性的重要因素之一。諸多報告中也描述了生物樣品中常見的YZ成分會導致qPCR分析靈敏度和動力學的顯著降低。

如何檢測YZ劑：

多種方法可用于評估生物樣品中是否存在YZ劑。常用方法是通過連續稀釋樣品來評估樣品的PCR效率，PCR效率的高低一定程度上反映出樣品質量的好壞。一個GX的PCR反應要求擴增效率在90%-110%之間，當擴增效率＞110%或＜90%，無論是相對定量還是JD定量其ZZ結果都會不準確。那么怎么來判斷是由于YZ劑引起的擴增效率異常呢？如圖1所示，通過標準曲線的狀態判斷，當原液的數據點位于標曲上方（紅色箭頭），則極有可能是樣本YZ劑YZPCR反應導致Cq值偏大。

內部擴增控制（IACs）是一種與目標核酸共純化和共擴增的方法，可用來檢測YZ劑和指示加工過程中的模板丟失。IACs可包裝在噬菌體外殼中，也可以是包含引物結合序列和探針檢測序列的單鏈寡核苷酸。在熒光信號采集過程中，探針結合位點的部分不匹配阻止了與IACs雜交，隨后可對熔解曲線進行分析，用以區分IACs和目標擴增子。IACs將是檢測病原體的優質方案，但這種方法不適用于細胞mRNA定量，因為考慮為每個單一mRNA設計模擬物是不現實的。

另外，也可以通過使用外源性對照來測試YZ劑，也稱為Spikes。該方法無論是在其構造技術的復雜性方面，還是在分析之后與它們的準確檢測相關的額外工作方面，相對都是比較簡單的。Spikes可以是RNA也可以是DNA分子，這取決于靶標類型。mRNA表達分析選RNA Spikes，DNA靶標分析選DNA Spikes。Spikes通常是幾千個堿基/堿基對異型序列，所以不會與任何已知目標交叉反應。

YZ劑類型：

YZ劑可以是核酸提取過程中使用的試劑，也可以是從生物樣品中提取的成分。YZ劑的影響，較好的情況是YZ劑會產生不準確的定量結果；最壞的情況是高度YZ會產生假陰性結果。常見的YZ劑類型如下：

1）樣品本身的成分：許多生物樣品本身就含有嚴重YZ逆轉錄和PCR反應的成分，如血液中的血紅蛋白、免疫球蛋白G，肌肉中的肌紅蛋白、膽鹽、腐殖酸、尿素和膠原蛋白，植物中的多糖多酚等。

2）提取和純化試劑的成分：許多用于純化核酸的試劑，如苯酚、氯仿、硫氰酸胍、鹽酸胍、乙二胺四乙酸、二甲基亞砜、十二烷基硫酸鈉、噻唑、三唑和核糖核酸等。

如何降低YZ劑的影響：

當樣本中存在YZ劑，高濃度模板中YZ劑濃度較高，對PCR反應的影響較大。低濃度模板由于稀釋使得YZ劑濃度有所下降，YZ劑的YZ作用也相應降低。如果是樣品本身的成分，可對模板進行稀釋，或者進一步純化，又或者改進提取方法來降低YZ劑的干擾。如果提取和純化試劑的成分，其本身就是最有效的逆轉錄和聚合酶鏈反應的YZ劑，因此需要在提取和純化過程中注意對試劑成分的去除，FZ污染模板。

Azure Cielo?實時熒光定量PCR系統

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關于熱膨脹測定的熱膨脹系數的影響因素：  

    GB/T16535-2008精細陶瓷線熱膨脹系數試驗方法頂桿法  

（來源：林賽斯（上海）科學儀器有限公司）